发布时间: 2019-11-19来源:浏览次数:作者:
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《肿瘤代谢与营养电子杂志》 2019年第6卷第3期
作者:
1罗敏,2吴晓军,2张欣,3董光,4熊骊龙,4王鹏程,1高葵,1余萍,1何美,5杜驰,5蒋鸥,6石汉平(1四川省内江第二人民医院肿瘤营养中心,四川 内江641000;2美睿健康产业(重庆)有限公司,重庆400117;3黑龙江省军区哈尔滨第二离职干部休养所,哈尔滨150001;4四川省内江市第二人民医院医务科/营养科,四川 内江641000;5四川省内江市第二人民医院肿瘤中心,四川 内江641000;6首都医科大学附属北京世纪坛医院胃肠外科/临床营养科/肿瘤代谢与营养北京市国际科技合作基地/首都医科大学肿瘤学系,北京 100038,北京 100038)
骨髓抑制是肿瘤患者化疗常见不良反应,以骨髓造血干细胞抑制为主要特征,临床表现为贫血、粒细胞缺乏性感染及明显的出血倾向[1]。临床研究表明,化疗后骨髓抑制明显强于放疗后骨髓抑制[2],重度的骨髓抑制是放化疗终止的原因之一,导致患者肿瘤不可控,甚至可危及肿瘤患者生命,并带来严重的社会经济负担[3-5]。因此,临床医生必须采取措施应对骨髓抑制,以提高肿瘤患者生存率。未变性的乳清蛋白分离物(ABD活性因子)具有高生物活性价值的蛋白,其主要成分为:β-乳球蛋白,α-乳白蛋白、血清白蛋白和免疫球蛋白,它可作为丰富的谷胱甘肽(glutathione-SH,GSH)的前体来源[6]。GSH广泛分布于人体各组织器官,是甘油醛磷酸脱氢酶的辅基和乙二醛及丙糖脱氢酶的辅酶,参与三羧酸循环,促进糖、脂肪和蛋白质代谢,并能激活多种生物酶。实验证据表明,GSH合成水平影响正常细胞和癌细胞对化学毒素或辐射的损伤[7],正常细胞内GSH含量高的患者通常在接受肿瘤治疗后效果更好,化疗出现不良反应的情况更少。但是肿瘤患者体内大部分癌细胞中GSH的含量都高于正常细胞,一般而言人体细胞内GSH的含量都受到机体严格调控[8],癌细胞中缺乏正常的GSH调节机制,由此肿瘤细胞常对化疗物产生耐药性[7]。提升正常细胞内GSH前体物,如谷氨酰半胱氨酸的含量反而会降低癌细胞中GSH含量[9],这是因为癌细胞内GSH的合成出现异常,出现负反馈机制[10]。这种负反馈机制使得癌变组织更容易被破坏,而正常细胞,因 GSH代谢正常,其自身保护机制更完善[25]。让肿瘤患者在进行化疗之前,接受预处理或伴随治疗,既增强了化疗对肿瘤细胞的选择性毒性,同时又保护了健康细胞免受损伤。尤其连续使用ABD活性因子8周以后,癌细胞中谷胱甘肽浓度逐渐降低,正常红细胞和白细胞数量增加。GSH对癌细胞和健康细胞的调节作用,是标准肿瘤治疗一个新的研究亮点[11]。既往也有研究报道,生物活性肽具有激活免疫、增加骨髓细胞DNA含量、抗 辐射等的能力[12,13]。本研究探讨ABD活性因子对肺癌患者化疗后骨髓抑制的影响。1 . 1 病例选择及一般资料
选取2017年4月至2018年12月在四川省内江市第二人民医院就诊的肺癌患者44例,根据入院时间随机分为干预组和对照组。干预组22例,男性患者16例,女性患者6例,年龄35~85岁。对照组22例,男性患者17例,女性患者5例。两组患者均经相应的病理或细胞学证实,肿瘤分期为Ⅲb、Ⅲc、Ⅳa,治疗前均行血常规、尿常规等辅助检查,KPS评分≥60分,预计生存时间大于一个月,采用相同的化疗方案(紫杉醇+顺铂,培美曲塞+顺铂),且两组患者间性别、年龄、病理类型、分期、化疗方案等无显著性差异 (P>0.05),具有可比性。1 . 2 方法
干预组在化疗期前1~2d,接受ABD活性因子辅助治疗,每次10g,每天2次,直至下一个化疗周期开始,具体化疗周期见表1,平均服用 28.3d。对照组接受常规化疗。当患者出现Ⅲ级以上骨髓抑制时应积极采取临床措施,如应用重组人粒细胞集落刺激因子 rhG-CSF。当患者出现Ⅱ级以上骨髓抑制时,可根据患者病史决定是否采取干预。两组患者白细胞、中性粒细胞、血红蛋白和血小板水平每周检测2次,当白细胞低于2.0X109/L时,每日复查血常规。观察两组患者外周血象变化情况。

1 . 3 观察指标
1.3.1 实验室指标
监测记录两组患者白细胞、粒细胞、血红蛋白和血小板水平。
1.3.2骨髓抑制情况
根据WHO化疗不良反应分级标准[14]进行评定(要求说明骨髓抑制分级标准),见表2。

1 . 4 统计学方法
采用 SPSS 22.0 软件进行数据分析,计量资料以`x±s 表示,采用t检验,计数资料采用χ2检验,以P<0.05为差异有统计学意义。
2 . 1 两组肺癌患者基本情况比较(见表3)

2 . 2 骨髓抑制情况
干预组,Ⅰ级骨髓抑制2例,Ⅱ级骨髓抑制3例,Ⅲ级骨髓抑制1例,Ⅳ级骨髓抑制0例。
对照组,Ⅰ级骨髓抑制4例,Ⅱ级骨髓抑制4例,Ⅲ级骨髓抑制3例,Ⅳ级骨髓抑制1例,经等级资料秩和检验后,差异有统计学意义,P<0.05。提示ABD活性因子可明显改善肺癌患者放化疗后骨髓抑制情况。见表4、表5。


2 . 3 Ⅲ~Ⅳ级骨髓抑制情况
干预组,Ⅲ~Ⅳ级骨髓抑制1例,对照组,Ⅲ~Ⅳ级骨髓抑制4例,差异,有统计学意义, P<0.05。提示,ABD活性因子可显著降低Ⅲ~Ⅳ级骨髓抑制发生率,见表6。

2 . 4 实验室指标
Ⅰ~Ⅳ级骨髓抑制患者中,干预组白细胞、粒细胞、血小板抑制情况明显低于对照组(P<0.05,P<0.05,P<0.05),血红蛋白抑制情况未见明显差异(P>0.05)。提示,ABD活性因子可提升化疗患者白细胞、粒细胞、血小板水平,见表7。

目前,放化疗仍是恶性肿瘤主要治疗手段,放射线可造成骨髓造血干细胞染色体变性[2],化疗则影响骨髓造血干细胞增殖周期。粒细胞和血小板半衰期较短,红细胞半衰期较长,故粒系和巨核系干细胞减少情况更易在外周循环池中表现出来[15]。通过分析发现,两组肺癌患者仅血红蛋白抑制情况无显著差异(P>0.05),可能与红细胞较长增殖周期相关。但两组患者血红蛋白抑制率无明显差异, 这说明无论是否启动骨髓抑制干预,肿瘤患者均存在贫血风险。考虑恶性肿瘤患者具有较高的营养不良发生率[16],贫血可能与营养不良相关。因此, 即使血红蛋白很少被作为营养不良预测的指标[16,17],临床医生都应积极评估患者营养状况,以规避营养相关临床风险。骨髓抑制程度个体差异虽大,但临床发生率高,医务工作者需提升临床风险管控能力[12],以改善肿瘤患者预后。研究表明,包括靶向药物在内的 众多抗肿瘤药物均具有骨髓抑制作用[19,20],尤其是铂类、抗代谢药物和烷化剂,抗肿瘤抗生素、植物抗微管药物次之[21] 。既往研究认为,骨髓抑制呈现剂量依赖的特点[22],联合用药会加重骨髓抑制,单药化疗骨髓抑制较轻[21]。因此,如何既保证化疗剂量又降低不良反应便是临床面临的难点。临床统计发现,Ⅲ级以上骨髓抑制治愈率低)[23],因此,Ⅲ级以 上骨髓抑制是启动临床干预的标志。临床常采用rhG-CSF、白介素-11等提升白细胞和血小板,亦有,使用地榆等中国传统中草药改善骨髓抑制情况的应用。然而,一些升白治疗会造成严重不良反应。例如,应用rhG-CSF可造成休克、慢性纤维性肺炎,反复输注血小板可形成同种抗体等[24]。一旦出现 Ⅲ级以上骨髓抑制,不仅延长了患者住院日,增加了医疗费用,同时还降低了医务工作者临床风险管 理效力[25,26],致使患者死亡率大幅度增加,因此,寻找不良反应小的替代治疗或预测骨髓抑制情况已 成为学界关注的热点[27]。本研究存在一些缺点是,为了收集情况相近的病例数,并未做病理分型的进一步探究。2007年加拿大进行了一项多中心、双盲、安慰剂对照的临床试验[28]。该研究的目的是为了观察特殊制备的分离乳清蛋白粉(ABD活性因子)是否可以提高肿瘤患者接受化疗/放疗生活质量的变量。 结果显示,在预防和逆转体重丢失恶液质方面有统计学显著的改善是明显的。此外,存活率也有所提高。这是一个重要的证据,表明在化疗或放疗时,谷胱甘肽强化是安全有效的。近年来关于 GSH的各项研究备受关注,如GSH可清除氧自由基、稳定细胞膜、中和有毒化学物质。另外,GSH在稳定血红蛋白[26],缓解神经元兴奋性中毒[29],缓解放化疗不良反应[30],治疗糖尿病并发症[31]及肝炎肝硬化[32]等方面均具有功效。综上所述,在肺癌患者化疗过程中,口服ABD活性因子可作为辅助手段,降低化疗过程中骨髓抑制的发生率和严重程度。ABD活性因子在肺癌治疗过程中的应用,对于丰富肺癌患者个性化治疗方案、提升医务工作者临床风险管控能力、提高肺癌患者生存率等方面有积极意义。致谢:Dr. Jimmy Gutman MD, Professor (Immunotec Science Research, Mc Gill University)对本文的支持和指导。
参考文献:【略】